技術文章
以下是經過優化的 siRNA轉染標準操作流程,整合了關鍵參數優化與避坑指南,適用于絕大多數哺乳動物細胞系(貼壁/懸浮),分為 實驗設計、操作步驟、質控要點三部分:
一、實驗設計關鍵點(轉染前必看)
要素 | 推薦方案 | 避坑提示 |
siRNA濃度 | 終濃度10-50nM(預實驗梯度測試) | >100nM易致脫靶效應 |
細胞密度 | 貼壁細胞:30-50%匯合度 | 過密→毒性↑;過低→效率↓ |
轉染試劑 | Lipofectamine™ RNAiMAX(通用) | 避免含血清培養基稀釋試劑 |
對照設置 | - 陰性對照:Scrambled siRNA | 缺一不可! |
二、標準操作流程(以24孔板為例)
Day 0:細胞鋪板
1. 消化細胞 → 用wanquan培養基 調整密度 → 每孔接種 0.5mL(貼壁細胞數:5-8×10?;懸浮細胞數:2×10?)
2. 37℃培養箱放置 16-24h(目標:轉染時匯合度≈40%)
關鍵細節:
- siRNA工作液濃度 = 儲存濃度×30(例:20μM儲存液→工作液終濃度≈33nM)
- 轉染試劑用量參考說明書(RNAiMAX通常 試劑:siRNA體積比=1:1)
Day 2:換液與檢測
1. 轉染后 6h 更換wanquan培養基(高毒性細胞如原代神經元需4h內換液)
2. 繼續培養 24-72h(基因沉默峰值時間需預實驗確定)
三、質控關鍵步驟(決定成敗!)
1. 轉染效率驗證(必做)
- 方案1:轉染 FAM標記siRNA → 24h后熒光顯微鏡觀察(效率>80%合格)
- 方案2:共轉染 EGFP質粒 → 計算綠色細胞占比(成本低但間接)
2. 沉默效果檢測
3. 細胞毒性評估
- MTT法:轉染后24h檢測,存活率應>85%
- 形態觀察:懸浮細胞聚團、貼壁細胞空泡化→提示毒性過強
四、高頻問題解決方案
問題 | 原因 | 優化方案 |
效率低 | siRNA降解/試劑失效 | 新解凍siRNA;更換轉染試劑批次 |
細胞死亡率高 | 復合物局部濃度過高 | 轉染前混勻培養基;懸浮細胞用旋轉培養法 |
沉默效果不穩定 | 基因半衰期長 | 延長檢測至72h;轉染兩次(間隔24h) |
脫靶效應 | siRNA種子區匹配非靶基因 | 更換siRNA序列;使用化學修飾siRNA(如Stealth™) |
五、特殊細胞優化方案
1. 原代細胞:
- 轉染試劑:選 DharmaFECT™ Primary 或 jetPRIME®
- 方案:轉染前饑餓處理2h(無血清培養基)→ 復合物孵育時間縮短至5min
2. 懸浮細胞:
- 試劑:Neofect™ DNA/RNA Transfection Reagent
- 步驟:離心收集細胞 → 重懸于復合物 → 24孔板每孔接種500μL(密度5×10?/mL)
3. 難轉細胞(如神經元):
- 專用試劑:NeuroFect™(佐劑提高穿透性)
- 轉染后不換液 → 直接補等體積wanquan培養基
六、試劑耗材推薦表
類型 | 推薦產品 | 適用場景 |
通用轉染試劑 | Lipofectamine™ RNAiMAX | 293T/HeLa等常見細胞 |
難轉細胞試劑 | jetPRIME® | 原代/干細胞/懸浮細胞 |
陽性對照siRNA | Silencer™ GAPDH siRNA | 體系驗證 |
陰性對照 | AllStars Neg. siRNA | 排除非特異效應 |
> 數據標準:合格實驗需滿足——轉染效率>80% + 沉默效率>70% + 細胞存活>85%
避雷總結:
1. 勿用含抗生素或血清的培養基稀釋復合物(滅活試劑)
2. 轉染后換液時間寧早勿晚(超8h毒性飆升)
3. 凍存siRNA避免反復凍融>3次(分裝儲存-80℃)
按照此流程操作,可穩定獲得可重復的基因沉默數據!
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